免疫沉淀是利用抗体特异性反应纯化富集目的蛋白的一种方法。抗体与细胞裂解液或表达上清中相应的蛋白结合后，再与蛋白A/G（ProteinA/G）或二抗偶联的agarose或Sepharose珠子孵育，通过离心得到珠子-蛋白A/G或二抗-抗体-目的蛋白复合物，沉淀经过洗涤后，重悬于电泳上样缓冲液，煮沸5-10min，在高温及还原剂的作用下，抗原与抗体解离，离心收集上清，上清中包括抗体、目的蛋白和少量的杂蛋白。
　　
　　免疫沉淀的实验过程比较简单，一般分为3个阶段；①抗原溶液的制备；②裂解物非特异性本底的预处理；③免疫复合物的形成与纯化。免疫沉淀的步是制备抗原溶液。任何抗原溶液均可作为免疫沉淀的材料来源，但免疫沉淀一般采用细胞或组织制备的裂解物。裂解物的制备可采用多种方法，其中选用温和的去污剂如非离子去污剂来裂解细胞。该方法能溶解细胞膜，破坏蛋白质之间许多微弱的相互作用，释放出大多数细胞内抗原。更重要的是方法十分温和，不破坏大多数抗原的结构和酶的活力。如果对抗原结构的完整或活力要求不严，或者抗原结合较为紧密，可以采用比较剧烈的条件来制备裂解物，如在强变性剂的溶液中进行煮沸，然后在免疫沉淀前经过稀释去除变性剂。一旦细胞裂解液制备好，即可进行预处理。
　　
　　免疫沉淀常见问题：
　　
　　1.免疫沉淀实验应如何把握抗体和缓冲液的比例？
　　
　　答：每次沉淀实验之前，考虑抗体/缓冲液的比例十分重要。抗体过少就不能检出抗原，过多则就不能沉降在beads上，残存在上清；缓冲剂太少则不能溶解抗原，过多则抗原被稀释。具体比例视具体情况而定。
　　
　　2.用于一般免染的抗体是否都可以用作免疫沉淀实验？
　　
　　答：抗体的性质对免疫沉淀实验影响很大。抗体不同，和抗原以及ProteinG或ProteinA的结合能力也就不同。所以一般免染能结合的抗体未必能用于IP反应。一般来说，多抗是沉淀反应的选择。另外，纯化的单抗、腹水和杂交瘤上清液也可用于免疫沉淀。
　　
　　3.免疫沉淀应该如何配制细胞裂解液？
　　
　　答：适当的细胞裂解液的选择取决于所要研究蛋白的特性。TritonX-100,NP40是非离子界面活性剂，作用温和;DOC（sodiumde-oxycholate），SDS是离子性的强活性剂。所以裂解液的配制时所用去污剂的种类和浓度以及盐浓度等条件需实验者进行优化。注意如果忘记加TritonX-100，只加DOC或SDS，可能使抗体*失去活性。
　　
　　4.为什么溶解抗原的缓冲液中要加入一定量的蛋白酶抑制剂？
　　
　　答：从活性细胞裂解出来的样品中，往往含有一定量的蛋白酶。为防止预检测蛋白的分解，修饰，溶解抗原的缓冲液必须加蛋白每抑制剂，并且在低温下进行实验。
　　
　　5.溶解抗原的缓冲液的配制需要注意什么？
　　
　　答：多数的抗原是细胞构成的蛋白，特别是骨架蛋白，缓冲液必须要使其溶解。为此，必须使用含有强表面活性剂的缓冲液，尽管它有可能影响一部分抗原抗体的结合。另一面，如用弱表面活性剂溶解细胞，就不能充分溶解细胞蛋白。即便溶解也产生与其它的蛋白结合的结果，抗原决定族被封闭，影响与抗体的结合。